流式细胞术及常见问题分析
目前,流式細胞術廣泛應用于細胞表面和細胞內分子表達特征的分析,界定不同種類的細胞群,測定分離出的亞類純度,分析細胞的大小和總量,它可以同時分析單個細胞的多個參數。它主要用于檢測標記在抗體上的熒光強度,這些熒光抗體則可以檢測與特定細胞分子結合的蛋白或配體,如與 DNA 結合的溴化丙啶 (PI) 等。
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染色步驟包括:將培養的細胞或組織樣品制成單細胞懸液,然后將細胞放入管子或酶標板中與熒光標記或未標記的抗體孵育。之后將細胞放入流式細胞儀中進行分析。
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懸浮緩沖液中染色的細胞樣品通過流式細胞儀時,由于鞘液的作用被限制在液流的軸線上,從而通過一個非常小的噴嘴。這種微小的“流液束”使細胞一個接一個地通過激光,細胞/粒子通過通道時散射的光線被多個探測器檢測到。其中光柱前有一個檢測器(稱為前向角散射或簡稱 FSC),它的旁邊有幾個檢測器(稱為側向散射或簡稱 SSC)。熒光檢測器用于檢測熒光染料本身。粒子/細胞通過光束時,將出現光線散射,散射會通過前向散射和側向散射被檢測到。散射和熒光數據會結合起來分析。其中前向角散射光與細胞的大小有關;而側向角散射則依賴于粒子/細胞的密度(比如胞漿顆粒數量,細胞膜尺寸),并往往以這種方式,根據不同的大小和密度的差異而將細胞群區分開來。當由相應激發波長的激光激發時,用于檢測或染色的熒光染料就會發光。這些粒子/細胞就可分別被檢測并進行數據分析。
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直接染色:
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直接免疫熒光染色時,細胞與直接結合有熒光染料(如 FITC 標記)的抗體孵育。它的優點在于只需要抗體孵育這一個步驟,從而消除了來自二抗的非特異性結合的可能性。這對細胞內染色特別有用,由于大的抗體熒光分子復合物包括二抗被困在細胞內造成背景,或甚至無法進入細胞,阻止了一抗的檢測。
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總結
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